Klon TG1 zum Nachweis des  Immuncheckpoint-Markers TIGIT in FFPE Gewebe
TIGIT antibody
TIGIT antibody
Strong TIGIT expression in a large number of tumor infiltrating lymphocytes in a seminoma with dense lymphocytic infiltrate
TIGIT antibody
TIGIT antibody
TIGIT antibody
TIGIT antibody
Strong TIGIT expression in tumor infiltrating lymphocytes in a seminoma with sparse lymphocytic infiltrate.
Fig. 4: Strong TIGIT expression in tumor infiltrating lymphocytes in a seminoma with sparse lymphocytic infiltrate.
TIGIT antibody
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Fig. 6: High fraction of TIGIT positive cells in peritumoral lymphocytes in a case of penis carcinoma.
Fig. 7: Low grade neuroendocrine carcinoma with scattered infiltrate containing TIGIT positive lymphocytes.
TIGIT antibody
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Fig. 9: High grade neuroendocrine carcinoma with focal accumulation of TIGIT positive lymphocytes.
Fig. 10: High grade neuroendocrine carcinoma with focal accumulation of TIGIT positive lymphocytes.
Fig. 11: Dense peritumoral and intratumoral infiltrate of TIGIT positive lymphocytes in a case of a poorly differentiated squamous cell carcinoma of the esophagus.
Fig. 12: High frequency of TIGIT positive lymphocytes in a lymphoepithelial carcinoma.
TIGIT antibody
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TIGIT antibody
TIGIT antibody
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Invasive urothelial carcinoma with dense peritumoral and intratumoral infiltrate of TIGIT positive lymphocytes.
TIGIT antibody
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TIGIT antibody
TIGIT antibody
TIGIT antibody
TIGIT antibody
High frequency of TIGIT positive lymphocytes in a Hodgkin lymphoma.
Fig. 20: High frequency of TIGIT positive lymphocytes in a Hodgkin lymphoma.
Fig. 21: TIGIT positive lymphocytes are present in the peritumoral and intratumoral lymphocytic infiltrate of a squamous cell carcinoma of the lung.
Fig. 22: TIGIT positive lymphocytes are present in the peritumoral and intratumoral lymphocytic infiltrate of a squamous cell carcinoma of the lung.
TIGIT antibody
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Fig. 24: High frequency of TIGIT positive intratumoral lymphocytes in a squamous cell carcinoma of the lung.
TIGIT antibody
TIGIT antibody
Fig. 26: TIGIT positive lymphocytes are located peritumoral but not intratumoral in a squamous cell ca
Fig. 27: Sparse TIGIT positive lymphocytes in a squamous cell carcinoma of the lung with strong desmoplastic reaction.
Fig. 28: Sparse TIGIT positive lymphocytes in a squamous cell carcinoma of the lung with strong desmoplastic reaction.
Fig. 29: High density of TIGIT positive lymphocytes in a squamous cell carcinoma of the lung.
TIGIT antibody
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High density of TIGIT positive lymphocytes in a squamous cell carcinoma of the lung.
TIGIT antibody
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Fig. 32: TIGIT positive lymphocytes in a bronchioloalveolar carcinoma of the lung.
Fig. 33: High frequency of TIGIT positive lymphocytes in an adenocarcinoma of the lung.
TIGIT antibody
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TIGIT antibody
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Fig. 36: High frequency of peritumoral TIGIT positive lymphocytes in a large cell adenocarcinoma of the lung.
Fig. 37: Abundant TIGIT positive lymphocytes in an adenocarcinoma of the ampulla vateri.
TIGIT antibody
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TIGIT antibody
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High number of TIGIT positive lymphocytes in an angiosarcoma
TIGIT antibody
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High number of TIGIT positive lymphocytes in an angiosarcoma.
Fig. 41: Frequent TIGIT positive lymphocytes in a liposarcoma.
Fig. 42: Frequent TIGIT positive lymphocytes in a liposarcoma.
Fig. 43: TIGIT positive lymphocytes are abundant in a Whartin tumor.
TIGIT antibody
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TIGIT positive lymphocytes are abundant in a Whartin tumor.
Fig. 45: Dense infiltration of an ovarian carcinoma by TIGIT positive lymphocytes.
Fig. 46: Dense infiltration of an ovarian carcinoma by TIGIT positive lymphocytes.
Fig. 47: A cervix uteri squamous cell carcinoma with numerous intratumoral TIGIT positive lymphocytes.
Fig. 48: A cervix uteri squamous cell carcinoma with numerous intratumoral TIGIT positive lymphocytes.
Fig 49: Squamous cell carcinoma of the uterine cervix with peritumoral and intratumoral infiltrate of TIGIT positive lymphocytes.
Fig. 50: Fig 49: Squamous cell carcinoma of the uterine cervix with peritumoral and intratumoral infiltrate of TIGIT positive lymphocytes.
Fig. 51: Squamous cell carcinoma of the uterine cervix with abundant intratumoral infiltrate of TIGIT positive lymphocytes.
Fig. 52: Squamous cell carcinoma of the uterine cervix with abundant intratumoral infiltrate of TIGIT positive lymphocytes.
Fig. 53: Squamous cell carcinoma of the uterine cervix with a high number of intratumoral TIGIT positive lymphocytes.
Fig. 54: Squamous cell carcinoma of the uterine cervix with a high number of intratumoral TIGIT positive lymphocytes.
Fig. 55: Peritumoral TIGIT positive lymphocytes in a case of endometrium carcinoma.
Fig. 56: Peritumoral TIGIT positive lymphocytes in a case of endometrium carcinoma.
Fig. 57: High density of TIGIT positive lymphocytes in a medullary breast cancer.
Fig. 58: High density of TIGIT positive lymphocytes in a medullary breast cancer.
High density of TIGIT positive lymphocytes in a medullary breast cancer.
Fig. 59: A case of medullary breast cancer with abundant TIGIT positive lymphocytes.
Fig. 60: A case of medullary breast cancer with abundant TIGIT positive lymphocytes.
Fig. 61: High density of peritumoral and intratumoral TIGIT positive lymphocytes in a medullary breast cancer.
Fig. 62: High density of peritumoral and intratumoral TIGIT positive lymphocytes in a medullary breast cancer.
Fig. 63: TIGIT positive lymphocytes in the subepithelial tissue of the lip (oral epithelium)
Fig. 64: TIGIT positive lymphocytes in the subepithelial tissue of the lip (oral epithelium)
Fig. 65: Oral mucosa with TIGIT positive lymphocytes in the subepithelial stroma.
Fig. 66: Oral mucosa with TIGIT positive lymphocytes in the subepithelial stroma.
TIGIT antibody
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Fig. 68: Oral mucosa with intraepithelial and subepithelial TIGIT positive lymphocytes.
Fig. 69: Abundant TIGIT positive lymphocytes in the spleen.
Fig. 70: Abundant TIGIT positive lymphocytes in the spleen.
Fig. 71: TIGIT positive lymphocytes are frequent in the thymus.
Fig. 72: TIGIT positive lymphocytes are frequent in the thymus.
Fig. 73: Thymus with high number of TIGIT positive lymphocytes.
Fig. 74: Thymus with high number of TIGIT positive lymphocytes.
Fig. 75: TIGIT positive lymphocytes are abundant in the mucosa of the appendix.
Fig. 76: TIGIT positive lymphocytes are abundant in the mucosa of the appendix.
Fig. 78: Appendix mucosa with dense accumulation of TIGIT positive lymphocytes.
Fig. 79: Appendix mucosa with dense accumulation of TIGIT positive lymphocytes.
Fig. 80: Appendix mucosa with TIGIT positive lymphocytes.
Fig. 81: Appendix mucosa with TIGIT positive lymphocytes.
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Immuncheckpoint-Proteine bieten vielversprechende Ansätze für die Krebstheraphie. Krebszellen können zusammen mit Zellen aus der Mikroumgebung des Tumors die körpereigene Immunabwehr unterdrücken, indem sie lokal immunhemmende Komponeten heraufregeln. Der TIGIT-Signalweg spielt eine wichtige Rolle bei der Hemmung der Immunantwort und verknüpft verschiedene Immuncheckpoints. Die neuen immunotherapeutische Ansätze setzen daher auf die Hemmung der TIGIT-Aktivität, insbesondere in einer Kombination mit weiteren Immuncheckpoint-Hemmern.

Der Immunrezeptor TIGIT (T-Zell-Immunrezeptor mit Ig- und ITIM-Domänen) gehört zur Familie der Poliovirus-Rezeptoren (PVR). TIGIT wird auf NK-Zellen, regulatorischen T-Zellen, follikulären T-Helferzellen, Gedächtnis-CD4 + T-Zellen und CD8 + T-Zellen exprimiert, aber nicht auf B-Zellen oder naiven CD4 + T-Zellen. TIGIT wirkt dabei auf einem hochkomplexen Weg als inhibitorischer Immuncheckpoint sowohl auf T-Zellen als auch auf natürliche Killerzellen (NK). Zu den bekannten Liganden für TIGIT gehören CD155 und CD112. Darüberhinaus interagiert das TIGIT / CD155 / CD112-Netzwerk mit weiteren Checkpoint-Reglern.

Studien an Entzündungs- und Krebsmodellen zeigen, dass T-Zellen die TIGIT-Expression hochregulieren können. Auch die TIGIT-Liganden CD155 und CD112 werden auf dendritischen Zellen und Makrophagen bei verschiedenen Krebsarten stark exprimiert. Darüberhinaus korreliert die TIGIT-Expression stark mit der Expression anderer co-inhibitorischer Moleküle, einschließlich PD-1. Zusätzlich zur direkten Hemmung zytotoxischer T-Zellen kann TIGIT weitere Immunzellen beeinflussen, um eine immunsupressive Tumorumgebung zu stimulieren. TIGIT bindet beispielsweise auf der Oberfläche dendritischer Zellen CD155 und hat einen Einfluß auf die Aktivität von NK-Zellen. Es sind zahlreiche Arzneimittel in der Entwicklung, die die Aktivität von TIGIT hemmen sollen.

Der Klon TG1 ist der erste monoklonale Antikörper für den immunhistochemischen (IHC) Nachweis von TIGIT (T-Zell-Immunrezeptor mit Ig- und ITIM-Domänen) in standardmäßig Formalin-fixierten und Paraffin-eingebetteten Gewebeproben. TG1 wurde auf zahlreichen Tumoren für den IHC-Nachweis TIGIT-positiver T-Zellen in der Tumormikroumgebung validiert. Histologische Studien mit TG1 an Tumorgeweben können wertvolle Hinweise für die klinische Forschung und für therapeutische Interventionen liefern, die am TIGIT-Tumorimmunologie-Checkpoint ansetzen.

1.
Li W et al. Expression of the immune checkpoint receptor TIGIT in Hodgkin’s lymphoma. BMC Cancer 2018, 18: 1209.
doi.org/10.1186/s12885-018-5111-1
2.
Blessin NC et al. Patterns of TIGIT expression in normal lymphatic tissue, inflammation and cancer. Disease Markers 2019, Jan 10;2019:5160565. eCollection 2019.
doi.org/10.1155/2019/5160565
3.
Hinsch A et al. et al. Expression of the immune checkpoint receptor TIGIT in seminoma. Oncol Lett. 2019, 18: 1497–1502.
doi: 10.3892/ol.2019.10428
4.
Scimeca, M. et al. Programmed death ligand 1 expression in prostate cancer cells is associated with deep changes of the tumor inflammatory infiltrate composition. Urol. Oncol. 2019, 37, 297.e19-297.e31.
doi: 10.1016/j.urolonc.2019.02.013

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